铬明胶溶液
¨   试剂：铬明矾(chrome alum)        0.25g
                明胶(gelatine)                     2.5g
                蒸馏水                                 500ml
¨   先将铬明矾溶解于40℃少量蒸馏水中，再加入明胶及蒸馏水，可在70 ℃水浴中使明胶溶化，搅拌均匀后，即可使用。如有残渣，可过滤后再用。
¨   用时稍加溶化，切片浸入2～3min，过夜晾干。
(二) 冰冻切片
¨  冰冻切片是指将组织在冷冻状态下直接切片。
¨  在切片前组织不经过任何化学药品处理或加热过程。
–   缩短了制片时间
–   抗原性不受损失
•   对稳定性差的抗原，如淋巴细胞表面抗原尤其适合。
 
¨  组织冻结过程中，细胞内、外的水分会形成冰晶，冻结的速度愈慢，冰晶颗粒愈大，可严重影响组织、细胞的形态结构。因此制备冻块时要求低温、速冻。
1、冰冻组织块的常用方法
¨   液氮中冰冻：组织投入液氮中 (一196℃)中10～20sec；
¨   干冰中加入丙酮(或异戊烷)，液体立即气化起泡，温度降至一70℃ ，将组织投入，若在干冰丙酮中置一盛有异戊烷的容器，组织投入该容器内结冻则更好；
–    上述组织在速冻时应浸埋于OCT包埋剂或甲基纤维素糊状液内，以保护组织。
–    制成冻块后若需保存，应以铝箔或塑料薄膜封包，贮存于-70 ℃冰箱。
2、切片
¨  供免疫组化用的冰冻切片同样要求附贴平整，并有连续性。
¨  载玻片也应清洁无油污，但一般无需涂抹粘附剂；
¨  切片时，使用恒温冷冻切片机，在箱内温度-25 ℃ 。切片厚度一般为4～8mm。
3、切片后处理
¨  切好的冰冻切片，室温下自然晾干1～2h后，入4℃丙酮固定10min，待干燥后作免疫组化染色或封存于-20℃。
¨  冰冻切片由于切片技术要求较高，不易得到连续性很好的切片，其形态结构亦不如石蜡片，且冻块和切片不便于长期贮存，因此冰冻切片的应用受限。
(三)    组织印片
¨  将洁净载玻片轻压于已暴露病灶的新鲜组织切面，细胞即粘附于玻片，晾干后浸入冷丙酮或醋酸-乙醇固定10min，自然干燥后染片或-20℃保存。
(四) 细胞培养片(细胞爬片)
¨  贴壁细胞培养时，置盖片于培养瓶中，使细胞在盖片上生长，达适当密度后取出固定(丙酮-20°C固定10～20min)，再进行免疫染色。
–   盖片的处理方法同载玻片的处理，但泡酸时间2h即可。
–   为了防止细胞脱片，可用多聚赖氨酸处理。
(五) 细胞涂片
¨  大多数细胞涂片由细胞悬液制成，包括：
–   血液、尿液、脑脊液；
–   体腔积液；
–   组织穿刺吸取，如骨髓、淋巴结或其他实质性组织
–   悬浮培养的细胞或贴壁细胞经消化后形成的悬液。
(五)  细胞涂片 (续)
¨  细胞涂片的方法：
–   手涂法
•   将细胞浓度调节到106/ml左右，可直接涂于载玻片上，但要均匀、不重叠。
•   图片范围应小于1cm直径，以节约试剂。
–   涂片机涂片法
•   将细胞样品制成2×105～6/ml 细胞悬液，吸取50～100ml (1～2×104～5cells) 加入涂片机内，1000rpm离心2min后细胞就均匀分布于玻片上。
三、免疫组化常用的染色方法
¨  根据标记物的不同分为
–   (一) 免疫荧光法
–   (二) 免疫酶标法
–   (三) 亲和组织化学法