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ELISA PROTOCOL 【Yale University 】
[ 文章来源: | 文章作者: | 发布时间:2007-01-01|  字体: [ ]  
Materials:
1)    TS  Buffer:    10  mM  Tris  pH  8.0
150  mM  NaCl
2)    TST  Buffer:  TS  Buffer  with  0.05%  Tween-20
3)    Alkaline  Phosphatase  Buffer:  50  mM  NaCarbonate
1 mM MgCl2
(Bring  to  pH  9.8  with  1  N  HCl)
4)    AP  Substrate:    p-nitrophenyl  phosphate  (5  mg/tablet).    Sigma
Cat.#  N9389
5)    AP-conjugated  secondary  Ab:    AP-Rabbit  anti-mouse  IgG
(Zymed).    Reconstitute  in  ddH2O  as  prescribed  by  manufacturer  and
aliquot  and  store  at  -70  °C.
6)    100  mM  EDTA  pH  8.0
Protocol:
1)    Add  50  µl  of  antigen  to  each  well  of  the  ELISA  plate.    I  use  a  1
µg/ml  of  purified  Sec4p  most  antigens  will  work  in  the  1-10  µg/ml
range,  but  you  need  to  determine  this  emperically.    Allow  the
antigen  to  bind  to  the  wells  at  room  temperature  for  1-2  hours  or
overnight  at  4  °C.
2)    Discard  antigen  solution  by  flicking  into  sink  and  then  placing
upside-down  onto  Kimwipes.    Wash  1X  with  100  µl  TST  Buffer.    Add
200  µl  TST  with  2%  BSA  to  block.    Incubate  at  room  temperature  for
1  hour.
3)    Discard  block  solution  and  add  50  µl  monoclonal  cell  culture
supernatants  directly  or  add  the  same  volume  of  sera  diluted  in  TST
w/  1%  BSA.    Incubate  1  hour  at  room  temperature.
4)    Discard  the  primary  antibody  solution  and  wash  3X  with  TST.
5)    Add  50  µl  of  diluted  secondary  antibody  conjugated  to  Alkaline
Phosphatase.    I  use  a  1:500  dilution  of  rabbit  anti-mouse  IgG
(Zymed).    Incubate  at  room  temperature  for  1  hour.    About  15  min
before  the  end  of  the  incubation  start  dissolving  the  p-nitrophenyl
phosphate  substrate  tablets.    For  each  ELISA  plate  dissolve  1  tablet
in  5  ml  of  AP  Buffer.
6)    Discard  the  secondary  antibody  solution  and  wash  3X  with  TST.
7)    Add  50  µl  per  well  of  the  p-nitrophenyl  phosphate  solution  and
incubate  at  room  temperature  for  10-30  min.    Stop  the  reactions  by
adding  50  µl  of  0.1  M  EDTA  pH8.0.    For  screening  monoclonals  it  is
best  to  let  them  go  until  all  of  the  positives  are  clearly  visible,
however  if  you  want  to  be  quantitative  it  is  important  not  to  let
them  get  intensely  yellow  or  they  will  be  off  scale--the  plate  reader
is  most  accurate  when  the  wells  have  just  begun  to  clearly  turn
yellow.


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